猪寄生虫病诊�?综合防治 -

蠕虫的常规检骋�/P>

( 1 ）虫体检查法：肉眼观察粪便中有无虫体。将被检粪便加人10 倍以上的清水，混匀沉淀，倒去上清液，反复数次，肉眼或放大镜在粪便中查找虫体，凭积累的经验或借助显微镜鉴别、�/P>

( 2 ）幼虫检查：有些线虫随粪便直接排出幼虫，有些是蠕虫卵在外界环境中很快孵化出幼虫。对皮类寄生虫的诊断可采用以下方法、�/P>

� 漏斗幼虫分离法：取直肠内容物或新鲜粪便，平铺于直�? - 4 厘米的漏斗内的筛上，漏斗下连接一根长�? - 15 厘米的橡皮管，橡皮管末端接一根小试管。在漏斗内加�?8 � 的清洁温水使液面与筛相接触，室温中放�? 一2 小时，新孵出的活泼幼虫沉于小试管底，弃上清液，将沉淀物置于载玻片镜检，可见活动的幼虫、�/P>

� 平皿幼虫分离法：取待检粪便3 一4 克，置于平皿或表面玻璃中，加适量40 � 温水，等5 一10 分钟后除去粪渣，用低倍镜检查平皿中的液体，观察有无活动的幼虫存在、�/P>

� 幼虫培养检查法：圆形目的线虫虫卵，在形态结构及大小� 相似，镜检往往难鉴别，为了确诊，常将幼虫经过培养，待发育成感染性幼虫后观测之。方法是将新鲜粪便塑成半球形置于平皿中，�?5 一30 � 温度下（室内或温箱中，按情况每天加少量水）经几天，用漏斗幼虫分离法处理，查有无活动的幼虫、�/P>

( 3 ）虫卵检查法

� 涂片法：�?0 ％甘油水溶液一滴置于载玻片上，然后用小玻棒或小柴梗取粪便一小块，与上述溶液混合，将较粗的粪渣推向一边后，均匀涂布，盖上盖玻片，即可镜检。如无甘油水溶液亦可用常水替代。本法简单，检出率不高，需反复检查才能证实。② 沉淀法：利用比重低于虫卵的水处理被检粪便，使虫卵沉淀集中、�/P>

自然沉淀法：取粪�? 一5 克，加水彻底混合使成悬液，用40 一60 目／英寸的铜丝筛滤取大块物质，静�?5 分钟后倾去上清液，如此反复直至上清液透明为止，弃去上清液，置沉淀物于载玻片，盖上盖玻片，镜检虫卵、�/P>

离心沉淀法：取粪便约1 克置试管中，加入5 倍量的水使其成混悬液，用40 目／英寸的铜丝筛过滤人离心管中，�?00 转／分离�? 一4 分钟，吸取管底沉渣或小心弃去上清液，置沉渣于载玻片上，盖上盖玻片，镜检虫卵、�/P>

� 漂浮法：采用比重大的溶液稀释粪便，使粪便中比重较小的虫卵漂浮集中到溶液的表面，再用显微镜检查。方法有如下几种：饱和盐水漂浮法：先配制食盐饱和溶液，在1000 毫升沸水中，加约36 0一380 克食盐，使溶解，以纱布过滤冷却后，如有结晶析出，即为饱和溶液。取粪便数克，置于小杯或试管中，加少量饱和盐水，仔细搅和，并逐渐加人饱和盐水，当溶液满至边际时，立即用筷子除去漂浮的大块粪便，然后静置半小时，此时比饱和盐水比重轻的蠕虫卵大多浮在表面，用铂金耳或金属小环在液体表面蘸取液膜数次，抖落在载玻片上，盖上盖玻片，进行镜检。蘸取液膜用的金属小环用后应在火焰上烧灼，以免把蠕虫卵带到下一份材料中去。本法亦可将混合的粪液注满顶立的小试管中，在试管口盖上盖玻片，使与液面相接触，并使之不留气泡。静�?0 一45 分钟，将盖玻片迅速取下，覆于载玻片上镜检、�/P>

硫酸镁饱和溶液：�?000毫升水中溶解920 克硫酸镁。硫代硫酸钠饱和溶液：在1000 毫升水中溶解1750 克硫代硫酸钠，溶液保存在不低�?5 � 温度中、�/P>

筛滤法：本法是将粪便先制成悬液，使通过不同孔径的筛，先经过粗筛将粪便中较粗的渣滓（如食物纤维等）保留在筛上，而将虫卵和较细粪便保留于滤液中。再将此滤液通过极细的尼龙筛，将虫卵保留于尼龙筛上，而更细的粪渣和可溶性色素均随滤液通过。将尼龙筛上的内容物取出，进行镜检。一般粗滤可采用40 一60 目／英寸的铜丝筛，细筛可�?60 目／英寸的尼龙筛。此法多用于大型及中型虫卵的检查、�/P>

( 4 ）蠕虫虫体的染色与鉴宙�/P>

� 吸虫：将收集所得的吸虫放置在盛有生理盐水的小瓶中，活的虫体可在生理盐水中放置一定时间，使其将内容物吐出，并轻摇小瓶，洗去虫体表面的赫液。这种虫体是半透明状，将其平铺于载玻片上，镜检观察，其内部构造隐约可见。但未经染色，虫体结构并不十分清晰，且其虫体不能保存。如欲保存，可将洗净后的虫体放人20 ％酒精或5 ％一10 ％的福尔马林溶液中、�/P>

如欲制成染色装片标本，由虫体在固定前平铺于载玻片上，上覆盖另一载玻片，并用橡皮筋缚紧，使虫体平展，为防止虫体被过分压扁而破裂，可在玻片两端垫以适当厚度的纸片，而后放人上述固定液中�? 一2 天后取出，分开玻片，取出虫体，仍浸于原来的固定液中，以备染色制成装片。常用的染色装片法有以下两种、�/P>

苏木紫染色装片法：将存于福尔马林固定液中的虫体取出，在流水中冲洗，尽可能将福尔马林冲净。如虫体存于70 ％酒精中，则需将虫体先移人60 ％和30 ％酒精中�? . 5 一1 小时，视虫体大小而定，大的虫体需时较长，最后移人蒸馏水中。将德氏苏木紫染液用水稀�?0 一15 倍，使呈葡萄酒色。经上述处理过的虫体移至稀释后的染液中，放置过夜，直至虫体内部各器官均已被深染为止。将虫体移人酸酒精（�?0 ％酒�?00 毫升加人盐酸1 一2 毫升制成），至虫体褐色或淡红色、�/P>

再于弱碱中复色，至虫体恢复到淡紫色（一般自来水或井水均呈弱碱性，即可用；亦可用蒸馏水加数滴氨水使呈弱碱性）。水洗虫体后顺序通过30 ％�?0 ％�?0 ％�? 。％�?5 ％各种浓度的酒精�? . 5 一1 小时，而后移人100 ％酒精中半小时使完全脱水，最后放人二甲苯中使虫体透明，待透明后立即装片。一般在二甲苯中时间不超过半小时，将完全透明的虫体，置于载玻片上，滴加树胶，盖上盖玻片即成。如树胶过于干硬，可加入二甲苯调成怡糖状、�/P>

盐酸卡红染色装片法：将存于福尔马林中的标本取出，在流水中冲洗，洗去福尔马林，后依次经30 ％�?0 ％和70 ％酒精中�? . 5 - 1 小时，保存于70 ％酒精中的标本，无需处理即可染色。将上述标本移人盐酸卡红染液�? -? 8 小时，然后在酸酒精中成褐色。用70 ％酒精冲洗虫体，除去余酸。依次在80 ％�?5 ％和100 ％酒精中�?0 分钟，再移人二甲苯中30 分钟透明后，置载玻片上，滴加树胶，覆以盖玻片封固、�/P>

� 绦虫：绦虫的收集和保存与吸虫基本相同，但收集绦虫必须注意保持头节的完整，因为头节是鉴定绦虫的主要依据之一，而头节相对在整个虫体来说比较细小，易于散失。对于大型虫体，其体节可达数百节，若做染色装片标本，只能选其中一段成熟体节或孕卵体节作为制作标本之用。绦虫节片染色装片标本的制作与吸虫相同，但头节无需染色，只要将头节固定�?0 ％酒精中，而后依次�?0 ％�?5 ％和100 ％的酒精中各5 - 10 分钟，使之脱水，再移人二甲苯�? 一10 分钟透明后，置于载玻片上，滴加树胶，覆以盖玻片封固、�/P>

� 线虫：收集的线虫应置于生理盐水中，充分振荡以洗去附着的豁液，尤其是那些具有较大口囊的虫体更需要充分清洗，以除去口囊内的杂物，但对寄生于肺内组织内的线虫，因其比较脆弱，清洗时易于崩解，应很快加以固定。固定前，可立即置于显微镜下检查，这时虫体是透明的，内部结构清晰可见。线虫固定最后用70 ％酒精于烧杯中，为防止酒精挥发，使虫体变干，可加�?0 ％的浓甘油，然后加热至底部有气泡升起（约80 � 即可）。此外，亦可用福尔马林生理盐水（生理盐水90 份加人福尔马�?0 份）固定虫体。固定后的虫体不透明，如欲观察内部结构，可加以透明，其透明方法有以下两种、�/P>

甘油透明法：将保存的虫体置于含有10 ％甘油的70 ％酒精的蒸发器内，置37 � 温箱中，待酒精自然挥发后，虫体留于甘油中，虫体即已透明，可供检查。如欲快速检查虫体，可将上述蒸发皿水浴加温，促使酒精迅速挥发，而使虫体在短时间内达到透明的目的。以上经透明处理的虫体可长期保存于甘油中，随时可取出检查、�/P>

乳酸酚透明法：甘油2 份、乳�? 份、石炭酸1 份、水1 份，混合即成乳酸酚透明液。先将线虫标本置于乳酸酚透明�? 份和�? 份的混合液中，半小时后移人纯乳酸酚透明液中，虫体很快透明，可供检查。检查后虫体应迅速放回原保存液中，否则虫体易于变黑。一般线虫不做染色装片标本，如有需要制法同吸虫、�/P>

( 5 ）虫卵的保存：为了保存粪便中的蠕虫虫卵以利随时检查，可取粪便用沉淀法收集卵，将所得沉淀渣加�?0 � 的福尔马林生理盐水中，再装人小瓶保存、�/P>

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